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(julio-diciembre 2024) Vol. 3 Núm. 2 pp. 1-18 ISSN (online): 2953-6596 DOI: https://doi.org/10.53591/recoa.v3i2.2460 |
Caracterización de Hongos Micorrízicos Arbusculares (HMA) en fincas productoras de cacao en Vinces-Ecuador.
Characterization of Arbuscular Mycorrhizal Fungi (AMF) in cocoa producing farms in Vinces-Ecuador.
Milton Senen Barcos-Arías1 ORCID: https://orcid.org/0000-0003-0863-6778
Elías Nelson Villasagua Miño2* ORCID: https://orcid.org/0009-0003-4071-485X
Andy Fabricio Mora Gonzalez3 ORCID: https://orcid.org/0000-0001-5638-6326
Angela María Reyes Laínez4 ORCID: https://orcid.org/0009-0005-8283-1194
Luis Damiani Sánchez Campoverde1 ORCID: https://orcid.org/0009-0007-6474-5828
1Universidad de Guayaquil. Facultad de Ciencias Agrarias. Av. Las aguas y Av. Juan Tanca Marengo, Guayaquil, Ecuador
2 ADAMA Andina B.V. Puerto Santa Ana, Edificio The Point, 5to piso, oficina 506.
3TRAVISER S.A. Av. Leopoldo Carrera, Edif. Olivos Bussines Center Piso 1, oficina 104
4Universidad Estatal Península de Santa Elena. Facultad de Ciencias del Mar. Ciudadela Universitaria vía La Libertad -Santa Elena, Ecuador.
*Autor correspondencia: eliasvillasagua@gmail.com
Recibido: 15 julio 2024 Aprobado: 20 noviembre 2024 Publicado: 31 diciembre 2024
RESUMEN
El suelo cacaotero en el Ecuador alberga una biodiversidad de microorganismos benéficos que aún no han sido estudiados; tales como, los hongos micorrízicos arbusculares (HMA) que a través de la simbiosis mutualista tienen una estrecha relación en la adaptación y desarrollo del cultivo de cacao. El objetivo de esta investigación fue aislar e identificar la presencia de HMA en tres fincas productoras de cacao orgánico bajo sistema agroforestal y una finca de manejo convencional o química en plantas entre rangos de 1-10 y 11-20 años de edad, provenientes del cantón Vinces-Ecuador. Se recolectaron muestras de suelo para determinar parámetros físicos-químicos como textura, humedad de suelo, pH, contenido de fósforo, además del contenido de esporas y la caracterización morfológica de HMA; a su vez, se tomaron muestras de raíces para determinar el porcentaje de micorrización. Los resultados demuestran que las plantas entre 1-10 años de edad de la finca I presentaron mejores resultados con 80,7% del porcentaje de micorrización y 159 esporas en 100 g de suelo; mientras que, la finca IV, en plantas de 1-10 años de edad, presentaron los menores valores con 36,0% de porcentaje de micorrización y 37 esporas en 100 g de suelo; no obstante, la clase textural del suelo, pH y nivel de fósforo de las cuatro fincas fueron similares. Se identificaron a nivel de esporas de HMA los géneros Acaulospora, Claroideoglomus, Funneliformis y Pacispora. Concluyendo que la diversidad de HMA en el suelo puede ser favorecida bajo sistemas agroforestales asociadas al cultivo de cacao.
Palabras claves: Cacao, micorrización, rizósfera, simbiosis.
ABSTRACT
The cocoa soil in Ecuador harbors a biodiversity of beneficial microorganisms that have not yet been studied; such as, the arbuscular mycorrhizal fungi (AMF) that through the mutualist symbiosis have a close relationship in the adaptation and development of the cocoa crop. The objective of this research was to isolate and identify the presence of AMF in three farms producing organic cocoa under an agroforestry system and farm with conventional or chemical management in plants between 1-10 and 11-20 years of age from the canton of Vinces-Ecuador. Soil samples were collected to determine physical-chemical parameters such as texture, soil moisture, pH, phosphorus content, in addition to the spore content and the morphological characterization of AMF; In turn, root samples were taken to determine the percentage of mycorrhization. The results show that the plants between 1-10 years of age of the farm I presented better results with 80.7% of the percentage of mycorrhization and 159 spores in 100 g of soil; whereas, farm IV, in plants of 1-10 years of age, presented the lowest values with 36.0% percentage of mycorrhization and 37 spores in 100 g of soil; however, the textural class of the soil, pH and phosphorus level of the four farms were similar. The genera Acaulospora, Claroideoglomus, Funneliformis and Pacispora were identified at the AMF spore level. Concluding that the diversity of AMF in the soil can be favored under agroforestry systems associated with the cultivation of cocoa.
Keywords: Cocoa, mycorrhization, rhizosphere, symbiosis.
Introducción
Durante más de un siglo el cacao (Theobroma cacao L.) ha sido uno de los cultivos de mayor importancia económica en el Ecuador, siendo la provincia de Los Ríos, una de las más productoras, donde suele ser el ingreso económico principal de muchas familias (Carranza et al., 2020).
En Ecuador, el cacao es considerado símbolo del país. Su importancia, en décadas anteriores, fue tal, que llegó a ser la principal fuente de generación económica y social del país, mientras que, actualmente, está dentro de los tres países más productores a nivel mundial, con una proyección de subir hasta el segundo lugar, superando a Ghana en 2024 (García, Pico y Jaimez, 2021; Paredes, et al., 2021; ANECACAO 2024).
Este cultivo es uno de los más adaptados a las condiciones climáticas de la región amazónica ecuatoriana, donde su fruto, es utilizado como materia prima para la exportación y elaboración de chocolate de empresas reconocidas a nivel local e internacional (Paredes, et al., 2022).
Los cultivos transitorios provocan una pérdida acelerada de macro y micronutrientes, lo que lleva a la dependencia de insumos agrícolas (Paredes, et al., 2021). Las prácticas agrícolas convencionales a gran escala, por lo general, dependen en gran medida de los insumos fertilizantes químicos, mientras que se pasa por alto, el gran papel que cumplen los microbiomas en distintos aspectos, como la absorción de agua y nutrientes del suelo por parte de las plantas (Busayo, et al., 2022).
Sin embargo, en la rizosfera de las plantas de cacao existe una diversidad de microorganismos benéficos que intervienen en la absorción de agua, nutrientes, producción de reguladores de crecimiento e incluso en la protección contra enfermedades de forma natural (Utomo et al., 2016).
Esto se da a través del proceso conocido como simbiosis, donde se encuentran los Hongos Micorrízicos Arbusculares (HMA) asociados a las raíces de las plantas de cacao, siendo estos, un componente esencial de los ecosistemas naturales y agrícolas, debido a que pueden colonizar las raíces de la mayoría de las plantas, considerándose así, como factores importantes para mejorar los procesos fisiológicos de la planta huésped (Runzhi, et al., 2020; Pacheco et al., 2022).
La simbiosis de los HMA en plantas de cacao demuestra ser beneficiosa para el crecimiento de las plantas, favoreciendo el desarrollo de las mismas, además de un aumento de la biomasa radicular, repercutiendo en una mayor absorción del fósforo y agua del suelo (Cuadros, Gómez y Rodríguez, 2011; Agele et al., 2018).
La principal función de esta asociación simbiótica, es el intercambio de nutrientes; la planta le brinda al hongo carbono que adquirió fotosintéticamente y el hongo ofrece principalmente nitrógeno y fósforo (Carrillo, et al., 2022).
Los hongos micorrízicos arbusculares (HMA) desempeñan roles importantes en el ciclo de carbono (C), nitrógeno (N) y fósforo (P) en los ecosistemas terrestres (Yunfeng et al., 2022), influyendo también, indirectamente, en la germinación de las semillas e incluso en la defensa de las plantas contra factores como el estrés abiótico y biótico (Naranjo et al., 2022).
En las zonas tropicales las micorrizas arbusculares desempeñan funciones importantes en los ecosistemas naturales y agrícolas. En ambientes naturales los HMA están involucrados en la estructuración de las comunidades microbianas que se desarrollan en la rizosfera de plantas (Cardoso, Nogueira y Zangaro, 2017).
Cuando los suelos son alterados por acción antropogénica pueden existir secuelas en la población de los HMA (Cardoso, Nogueira y Zangaro, 2017; Bertolini et al., 2018); sin embargo, es importante mencionar que las micorrizas han sobrevivido en los sistemas agroforestales tradicionales durante años, permaneciendo prácticamente en lugares perturbados, cumpliendo igualmente sus funciones, siendo importantes, también, por ejemplo, en la restauración de la vegetación nativa en hábitats perturbados por la conexión de las plantas con sus simbiontes fúngicos (Gooden, Thompson & Francés, 2020).
Según Albornoz et al., 2021, solamente el 1% de las especies vegetales, han sido evaluadas, por lo que el tipo de micorrizas en la mayoría de las plantas solo ha sido inferido. Este desconocimiento de la presencia de las micorrizas arbusculares en los sistemas de producción agrícola, conociendo ya los beneficios de estos hongos, ha ido generando un aumento en las investigaciones con este tipo de asociaciones, especialmente, en zonas tropicales, donde se cree hay mayor presencia de HMA (Pacheco et al., 2022; Álvarez et al., 2021).
En los suelos cacaoteros del cantón Vinces, provincia de Los Ríos no existen reportes sobre la presencia de hongos micorrízicos arbusculares por lo que resulta importante conocer la presencia de las micorrizas en estos suelos; dado que, parte de las zonas cultivas en este cantón, se dedican a la producción de este cultivo. Con los antecedentes antes expuestos, esta investigación se planteó como objetivo de identificar la presencia de HMA en diferentes fincas productoras de cacao en la zona de Vinces, Ecuador.
Materiales y Métodos
2.1 Sitios de muestreo
Las muestras de suelo y raíces fueron recolectadas en el cantón Vinces, provincia de Los Ríos, que posee temperatura promedio de 26 ºC, altura de 14 m.s.n.m. y precipitación promedio anual de 1680 mm. Para el estudio se seleccionaron cuatro fincas, tres de estas con nula aplicación de agroquímicos (orgánica) y una convencional o química. Las fincas poseen plantas de cacao CCN-51; en donde, para recolectar las muestras se separaron según su ciclo vegetativo que comprendían entre rangos de 1-10 y 11-20 años de edad, con el fin de conocer si existía una mayor o menor micorrización y concentraciones de esporas, según la edad de las plantas. La finca I está ubicada en la parroquia Antonio Sotomayor (1°38'25'' S 79°46'50'' O), la finca II en el recinto San Juan de Abajo (1°33'24'' S 79°43'10 O''), la finca III en el reciento Máximo Guizasola (1°33'29'' S 79°44'5 O'') y la finca IV convencional o química en el recinto Santa Mariana (1°33'35'' S 79°44'7 O'').
2.2 Recolección de muestras
Las muestras fueron recolectadas en el mes de mayo del 2017, se tomaron cinco muestras compuestas de suelo y raíces, según el rango de edad establecido. Cada muestra fue tomada a una distancia de 20 cm con respecto al tronco, a una profundidad de 20 cm. Se separó 1 kg de suelo por cada finca, para realizarles un análisis físico-químico, las muestras restantes fueron utilizadas para realizar el conteo de esporas y porcentaje de micorrización.
2.3 Análisis físico-químico de los suelos estudiados
Se enviaron las muestras de suelo al Instituto Nacional Autónomo de Investigaciones Agropecuarias (INIAP) para conocer sus características físico-químicas. Los parámetros analizados fueron: textura y humedad del suelo, materia orgánica por el método de titulación de Welkeley Black, pH por suspensión del suelo: agua 1:2.5, conductividad eléctrica a través del conductímetro y fósforo por el método Olsen modificado.
2.4 Conteo de esporas de HMA
Se realizó mediante el método de tamizado y decantación en húmedo propuesto por Gerdemann y Nicolson (1963), pesando 100 g de suelo en un vaso precipitado de 1000 mL para luego completarlo con agua, luego se efectuó la decantación por los tamices de 500 μm, 75 μm y 45 μm; esta decantación se realizó tres veces. Lo sedimentado en el tamiz de 45 μm se depositó en tubos falcón de 50 mL para completar con agua hasta los 45 mL. Los tubos falcón pasaron a la centrifuga (modelo Sorvall™ Legend™ XT/XF marca Thermo Scientific™) y dejados por 5 min a 5000 rpm a 28 ºC. Se retiró los tubos de la centrifuga para remplazar por 10 mL de Tween 20 y nuevamente llevados a la centrifuga. Posteriormente, se retiró el sobrenadante para para realizar el conteo de las esporas usando el estereoscopio.
2.5 Tinción de raíces y porcentaje de micorrización
El procedimiento de tinción de raíces se utilizó el propuesto por Phillips y Hayman (1970) modificados por Kormanik et al. (1979). Las raíces se lavaron con agua, fueron sumergidas en KOH al 10% durante 24 horas, luego se lavó el KOH de las raíces para sumergirlas en peróxido de hidrogeno por 20 minutos, posteriormente en HCL al 1% por 5 minutos. Pasado el tiempo de estar sumergidas en HCL se agregó azul de tripano al 0,05% en lactoglicerol y se autoclavaron las raíces por 10 min a 121 ºC (15 lb de presión). Las raíces fueron colocadas en portaobjetos para determinar el porcentaje de micorrización (% MIC) a través de la fórmula propuesta por McGonigle et al. (1990).
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2.6 Identificación morfológica de las esporas de hongos micorrízicos arbusculares
El criterio de identificación morfológica de los géneros de HMA se consideró características de color, forma, tamaño, número de paredes o capas que forman la espora y la unión o presencia de hifa suspensoria. Como referencia se usaron las investigaciones de Goto et al. (2008), Pereira et al. (2015), Pérez-Luna et al. (2016), Sánchez-Roque et al. (2016) e INVAM (2017).
2.7 Análisis estadístico
No se utilizó un diseño experimental, se realizó una comparación entre el número de esporas y porcentaje de micorrización de las tres fincas con manejo orgánico y la testigo con manejo convencional. Los datos fueron analizados por el procedimiento estándar de análisis de varianza (ANDEVA) mediante el software estadístico IBM SPSS Statistics versión. La diferencia significativa para la separación de medias de los tratamientos, se realizó por la prueba de Tukey (p≤ 0,05%).
Resultados y Discusión
3.1 Caracterización morfológica de HMA presente en el suelo de las fincas
Las muestras de suelo que se recolectaron de las cuatro fincas, se logró identificar los siguientes géneros y especies de micorrizas arbusculares como se muestra en la Figura 1. Los géneros encontrados corresponden a Acaulospora bireticulata, Acaulospora excavata, Claroideoglomus lamellosum, Funneliformis coronatum, Funneliformis geosporum y Pacispora boliviana.
Acaulospora bireticulata fue identificada por el diámetro, que osciló entre los 112,5 µm, además de poseer tres capas, la externa (1 µm), la interna (2,5 µm) y la media (10 µm), sus colores fluctuaron entre amarillo a café claro amarillento (Tomio et al., 2008). Sánchez-Roque et al. (2016) encontraron la especie Acaulospora excavata en suelos de plantas orgánicas de Coffea arábica, esta especie se caracteriza por presentar un diámetro de 105-112,5 µm, agujeros y ornamentaciones en la superficie de la espora de 7,5 µm de diámetro, una pared con un tamaño de 5 µm y color de las esporas fluctuaron de amarillo ocre a anaranjado claro (Pereira et al., 2015; Pérez-Luna et al., 2016).
Claroideoglomus lamellosum poseía un diámetro de 122,5 µm, presento dos capas visibles que la recubren, una capa externa (5 µm), la capa media (2 µm) y no se pudo observar claramente a la capa interna, por lo que encuentra muy unida a la capa media, característico de esta especie, los colores de las esporas fueron entre crema y amarillo pálido (Jean-Martial et al., 2013; INVAM, 2017). La especie Funneliformis coronatum su promedio en el diámetro fue de 95 µm, mostró 2 capas claramente visibles, la capa hialina externa (3 µm) y la capa interna de color amarillo grisáceo (2 µm), características de esta especie; sin embargo, los colores oscilaron de amarillo pálido a café claro (INVAM, 2017), además en estudios con esta especie se ha comprobado que posee la capacidad de producir mayor cantidad de glicoproteína (glomalina) (Sharma et al., 2017).
Funneliformis geosporum presentó un diámetro de 120 µm, la capa externa hialina de 1 µm de grosor, capa media amarillo o naranja de 6 µm y la capa interna amarilla pálida de 1,5 µm, la coloración de las esporas entre amarillo y naranja (INVAM, 2017), en México se ha reportado la presencia de esta especie asociada al cultivo de Saccharum officinarum L. en suelo con pH entre 6,5 a 7,0 (Sanchez-Lizarraga et al., 2017). La especie Pacispora boliviana ha sido reportada con la siguientes características de poseer un diámetro entre 80 µm y 107,5 µm, además la capa externa hialina (2 µm), la capa media (4 µm) y la capa interna (2 µm) con colores desde amarillo pálido a una tonalidad de color naranja, la presencia de ornamentaciones y agujeros en la superficie de la espora (Oehl y Sieverding, 2004), similares a la encontrada en este estudio, además ha sido reportadas en zonas de Sudamérica como Bolivia y en Ecuador en suelos provenientes bosques del trópico húmedo con niveles medio de nitrógeno y fósforo (Aragão et al., 2013; Moína-Quimí et al., 2018).
Estos géneros identificados son semejantes a los reportados por Rojas-Mego et al. (2014), quienes investigaron la abundancia y diversidad de HMA asociados al cultivo de cacao en tres agroecosistemas de la Amazonía de Perú; en donde, las especies pertenecían a los géneros Acaulospora, Claroideoglomus, Ambispora, Glomus y Archeospora.
Moína-Quimí et al. (2018), reportaron la presencia de micorrizas arbusculares en zonas del trópico húmedo del Ecuador del género Acaulospora, Ambispora, Claroideoglomus, Diversispora, Funneliformis, Glomus y Pacispora, en plantas de cacao (Theobroma cacao), banano (Musa spp.) y niguito (Muntingia calabura), estos géneros reportados son similares a los encontrados en las cuatro fincas del cantón Vinces asociados a las plantas de cacao. En este contexto, Lacatela et al. (2017), en suelo del cantón Babahoyo de la provincia de Los Ríos en plantas de cacao CCN-51, observaron la presencia los géneros Acaulospora mellea, Glomus mosseae, Glomus fasciculatum y Gigaspora gigantea bajo sistema agroforestales.

Figura 1. Esporas de hongos micorrízicos arbusculares observadas a 100x. A: Acaulospora bireticulata; B: Acaulospora excavata; C: Claroideoglomus lamellosum; D: Funneliformis coronatum; E: Funneliformis geosporum; F: Pacispora boliviana.
3.2 Cantidad de esporas de HMA presentes en las fincas
Las concentraciones de esporas en la finca I en los rangos de edad entre 1-10 y 11-20 presentaron una mayor concentración de 165 y 152 esporas/100 g de suelo respectivamente, como se observa en la Figura 2, presentando diferencia estadística significativa en comparación a la finca IV que se realiza su producción de manera convencional. Las concentraciones de esporas en la finca I se deben posiblemente a la diversidad de especies asociadas a las plantas de cacao, encontrando especies de frutales como naranja (Citrus sinensis), zapote (Quararibea cordata), banano (Musa paradisiaca), aguacate (Persea americana) y mamey (Mammea americana), especies maderables como guachapelí (Albizia guachapele), caña guadua (Indian thorny bamboo) y palo prieto (Erythrina glauca); mientras que, en la finca II y III las especies asociadas al cultivo de cacao se encontraban naranja (Citrus sinensis), limón (Citrus limon), banano (Musa paradisiaca) y palo prieto (Erythrina glauca).
Prieto-Benavides et al. (2012) observaron altas concentraciones de esporas en suelos provenientes de cultivos de cacao asociados a cultivos de especies frutales y maderables, por lo que manifiestan que la diversidad y cantidad de esporas se encuentra relacionado a la biodiversidad de especies vegetales; en este contexto, Meza et al. (2017) observaron mayores concentraciones de esporas por gramo de suelo en plantaciones de melina (Gmelina arborea) asociadas a un sistema agroforestal. Por lo tanto, las concentraciones de esporas de HMA en zonas con diversidad de especies vegetales pueden incluso considerarse como indicadores de deficiencia o valores altos de las propiedades físicas y químicas del suelo (Sousa et al., 2018).

Figura 2. Concentraciones de esporas por finca según su rango de edad; valores promedios de cinco replicas; letras distintas sobre las barras indican diferencias estadísticas significativas según test de Tukey (p<0,05); ± error experimental.
3.3 Porcentajes de micorrización
El mayor porcentaje de micorrización se observó en la finca I para las plantas de cacao con edad entre 1-10 y 11-20 años, presentando valores de 80,3 y 79,3% respectivamente, como se observa en la Figura 3-4, encontrando diferencia estadística significativa entre las fincas en estudio. Por otra parte, la finca IV en plantas con edad de 1-10 y 11-20 años presentaron menor porcentaje de micorrización de 26,0 y 48,7% respectivamente. El elevado porcentaje de micorrización de la finca I no se ve afectada por la edad de las plantas; dado que, se obtuvieron cercanos porcentajes de micorrización; además que, ambas plantaciones mantenían su agroecosistema de especies vegetales (Prieto-Benavides et al., 2012); en este contexto, Meza et al. (2017) obtuvieron altos porcentaje de micorrización en plantas de Gmelina arborea en edad de 1 año; sin embargo, al realizar un evaluación a los 3 años observaron que el porcentaje disminuyó, atribuyéndole esta reducción a la pérdida de las especies vegetales que se encontraban en el primer año del establecimiento de la plantación.
Lara-Pérez et al. (2014) indican que un suelo proveniente de ecosistemas tropicales, la población e infección micorrízica es mayor, por tal manera, se presume que la alta micorrización en la finca I se presenta por el agroecosistema forestal en el que se encuentran las plantas de cacao.
La baja micorrización en la finca IV posiblemente se produce por la reiterada fertilización con alto contenido de fósforo; dado que, las HMA no realizan su efectiva simbiosis con las plantas, repercutiendo en una baja reproducción y colonización micorrización (Ova et al., 2015; Frater et al., 2017; Mai et al., 2018), además, otro factor que se relaciona a la baja micorrización es la aplicación de fungicidas, así lo reportan Wang et al. (2018) al observar que aplicando Benomil en pruebas de campo y laboratorio, disminuyó la micorrización y concentraciones de esporas.

Figura 3. Micorrización de las fincas según su rango de edad; valores promedios de cinco réplicas; letras distintas sobre las barras indican diferencias estadísticas significativas según test de Tukey (p<0.05); ± error experimental.

Figura 4. Estructura de los hongos micorrízicos arbusculares (HMA) observadas con el campo de 40x. A: Espora con una parte de su hifa de sustentación o apresorio germinativo; B-C-D: Vesículas e hifas.
3.4 Parámetros físicos-químicos del suelo en la concentración de espora y micorrización
El suelo de las fincas en el análisis físico de suelo, demuestran que las cuatro fincas poseen una textura franco limoso, ideales para el desarrollo del cultivo de cacao, además, son propicios para otorgar una mayor colonización y esporulación de las micorrizas arbusculares (Lacatela et al., 2017). El pH del suelo de las cuatro fincas en estudio, se encontraban entre rangos de 5,4 a 5,8 (medianamente ácido); por lo que, se puede mencionar que el pH del suelo no influyó en las concentraciones de esporas y micorrización de las fincas; dado que, se encontraban en rangos cercanos (Figura 5-6); no obstante, en otros estudios con HMA se ha demostrado que poseen la capacidad de tolerar un bajo y alto pH, según el género de micorriza (Carrino-Kyker et al., 2017; Wang et al., 2017); en este contexto, Rojas-Mego et al. (2014) encontraron mayor abundancia de esporas en fincas de cacao bajo sistema de cobertura utilizando Pueraria phaseoloides con un suelo de 4,6 de pH con una textura franco.
La conductividad eléctrica (C.E.) en las cuatro fincas, demuestran que no son suelos salinos por lo que se encuentran en valores entre 0.35 y 0.96 dS/m (Figura 5-6); sin embargo, el mayor valor de C.E. se presentó en la finca I; mientras que, la finca IV presento el menor valor, por lo tanto, es importante mencionar que la C.E. y el pH en este trabajo no fueron factores que influyeron en las concentraciones de esporas y micorrización; dado que, en otros trabajos se ha demostrado que en plantas de arroz inoculadas con micorrizas sometidas a estrés salino, otorgan que las plantas produzcan una mayor producción fotoquímica para la fijación del CO2, optimizando el uso de la energía solar en sus procesos fotosintéticos, aumentando así la tolerancia a la salinidad de la planta. Por otro lado, en los tejidos vegetales aéreos, los HMA intervienen en la extrusión de Na+ del citoplasma, secuestrándolo en la vacuola (Estrada et al., 2013; Porcel et al., 2016; Ruiz-Lozano et al., 2018).
La finca I y II presentaron una mayor micorrización y concentración de esporas en los rangos de edad de 1-10 y 11-20 años, por lo que se presume que el alto contenido de materia orgánica (M.O.) de 5,5 y 5,1 % respectivamente (Figura 5-6) favoreció la colonización micorrízica. Por otra parte, es importante mencionar que alto contenido de M.O. en el suelo está relacionado a la presencia de las otras especies asociadas a la finca; dado que, al producirse el desprendimiento de las hojas se acumulan en el suelo produciendo un efecto de acondicionamiento para el desarrollo de los macro y microorganismos benéficos, así otorgando un mejor desarrollo de las plantas (Rojas-Mego et al., 2014; Verzeaux et al., 2017).
Las cuatro fincas presentaron un nivel óptimo de fósforo que oscila entre los 62 y 75 ppm; sin embargo, este factor químico del suelo al parecer no fue un factor limitante en la producción de esporas y la colonización de las raíces de las plantas de cacao, pues a medida que el nivel de fósforo aumenta, estos parámetros no se ven afectados, además la finca I presentó una mayor micorrización y concentración de esporas aunque existiera una mayor cantidad de fósforo de 75 ppm; mientras que la finca IV su concentración de fósforo reportada se encontró en 62 ppm (Figura 5). La mejor micorrización se presentó en la finca I en los rangos de edad 1-10 y 11-20 años en donde presentaron 80,3 y 79,3 % respectivamente, además que su contenido de fósforo en el suelo se encuentra en 75 ppm, por lo que se concreta que la micorrización en cacao en presencia de 75 ppm de fosforo no es un factor limitante para el desarrollo e infección de los HMA; en este contexto, Bañuelos et al. (2017) observaron en plantas de Persea Americana que la colonización micorrízica disminuye a partir de una concentración de 80 ppm; mientras que, a concentraciones de 20 ppm la micorrización fue de 78.3 %.
La finca IV proviene de un manejo convencional o químico, por lo que se especula que la baja esporulación y colonización de los HMA, se debe a la aplicación de fungicidas para el control de enfermedades de cacao; por ende, es menor la población de estos microorganismos, en cambio, en las otras fincas ocurre lo contrario por lo que la aplicación de fungicidas no se considera para el control de enfermedades, además el contenido de fósforo, pH, conductividad eléctrica y materia orgánica del suelo de las cuatro fincas se encuentra en valores cercanos por lo que se difiere plenamente que el contenido de esporas y micorrización es causada por la aplicación de los fungicidas. En este contexto, Atens SL (2016), nos muestra una tabla con ingredientes activos que afectan el normal desarrollo de las micorrizas, entre los que se encuentra Propiconazole, Fosetil de aluminio y Mancozeb, que suelen ser usados por los agricultores cacaoteros para control de hongos, disminuyendo así, la micorrización y concentraciones de esporas de HMA. Así mismo, Henning et al. (2018) comprobaron que la aplicación de fuentes de fertilizantes a base de nitrógeno más la aplicación fungicidas durante 4 años redujeron la riqueza de HMA, cambiando los patrones de esporulación e incluso redujeron la diversidad y la productividad en las comunidades vegetales.
En otras investigaciones se comprobó que el manejo de un suelo con labranza convencional la concentración de esporas disminuye, en comparación a un suelo de labranza cero que la población es mayor de los HMA (Bainard et al., 2017; Souza et al., 2017). La ausencia de especies asociadas al cultivo de cacao en la finca IV posiblemente sería otra causa para la baja esporulación y micorrización (Meza et al., 2017; Sousa et al., 2018).

Figura 5. Concentraciones de esporas por finca según su rango de edad y su relación con factores químicos del suelo. A: Contenido de fósforo; B: Materia orgánica; C: pH del suelo; D: Conductividad eléctrica. Valores promedios de cinco replicas; ± error experimental.

Figura 6. Micorrización por finca según su rango de edad y relación con factores químicos del suelo. A: Contenido de fósforo; B: Materia orgánica; C: pH del suelo; D: Conductividad eléctrica. Valores promedios de cinco replicas; ± error experimental.
Conclusiones
La edad de una plantación de cacao (Theobroma cacao L.) no es un factor limitante en la micorrización y contenido de esporas de las micorrizas arbusculares, además los factores físicos y químicos del suelo son óptimos para el desarrollo de las especies reportadas en este estudio de micorrizas Acaulospora bireticulata, Acaulospora excavata, Claroideoglomus lamellosum, Funneliformis coronatum, Funneliformis geosporum y Pacispora boliviana; no obstante, el manejo convencional o químico de las plantaciones de cacao al parecer es un limitante en el desarrollo de los HMA en la esporulación y micorrización en comparación a las fincas orgánicas; sin embargo, es indispensable destacar que el acompañamiento de especies forestales y cultivos de frutales asociadas al cultivo de cacao de manejo orgánico intervienen en la presencia de las micorrizas arbusculares.
Conflicto de intereses
Los autores declaran que no existe conflicto de interés.
Contribución de los autores
Elías Villasagua participó en la recolección de los datos de cada variable y en la revisión bibliográfica. Milton Barcos Arias y Andy Mora González participaron en el diseño de la investigación, análisis e interpretación de los datos, preparación y edición del manuscrito. Angela María Reyes Laínez, Luis Damiani Sánchez Campoverde participaron en la revisión del contenido del manuscrito.
Referencias
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